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免疫熒光染色是實驗室常用的技術(shù)之一,但在操作過程中,有許多需要注意的細(xì)節(jié),任何一個環(huán)節(jié)的失誤都可能導(dǎo)致實驗失敗。本文將為您介紹免疫熒光染色的注意事項,并附上零失誤封片技巧。
1. 抗體選擇:選擇針對您研究的目標(biāo)蛋白特異性高、親和力強的抗體,一抗的濃度需要預(yù)實驗摸索。一抗?jié)舛冗^高(本身熒光實驗,一抗的濃度就較高),也是造成自發(fā)熒光強的重要原因。
2. 抗體稀釋:根據(jù)抗體說明書建議,使用合適的稀釋液和稀釋比例進(jìn)行抗體稀釋。
3. Blocking:使用合適的Blocking 液進(jìn)行Blocking 處理,以減少非特異性結(jié)合,一般采用動物血清,在室溫下封閉1h左右。建議適當(dāng)延長封閉的時間至2h。如果室溫較低,可以考慮采用37℃孵育箱進(jìn)行封閉,優(yōu)化封閉時間,充分去除組織中的類屬抗原。
4. 二抗選擇:選擇與一抗種屬匹配的熒光標(biāo)記二抗,二抗在4℃長時間放置后可能有部分熒光素沉淀,導(dǎo)致染色結(jié)果有星星點點的雜質(zhì),損失珍貴樣本!建議配成工作液后,高速離心,取上清使用。
5. 洗滌:在每一步操作后,充分洗滌以去除未結(jié)合的抗體和染料。
6. 封片:選擇合適的封片劑進(jìn)行封片,避免熒光淬滅。
7. 對照設(shè)置:設(shè)置合適的陽性和陰性對照,以確保實驗結(jié)果的可靠性。
零失誤封片技巧:
在滴加封片劑之前,確保切片上沒有多余的液體。封片劑也不宜添加過多,可用10ul槍頭吸取少量,點在每個樣品邊緣,緩慢蓋片。
滴加適量的封片劑,避免產(chǎn)生氣泡。
用10ul槍頭滴加~5ul/樣品(根據(jù)組化筆大小 酌情更改封片劑滴加量) 千萬不可打出氣泡!不要把槍頭最后一滴封片劑打出!氣泡會嚴(yán)重影響封片效果!
如果不小心產(chǎn)生氣泡 → 可以用鑷子輕輕將氣泡擠出。
使用干凈的蓋玻片,輕輕按壓,使封片劑均勻覆蓋切片。
避免在蓋玻片上留下指紋或污漬。
以上就是免疫熒光染色的注意事項及零失誤封片技巧。希望 這些技巧能幫助您順利完成實驗。
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